Содержание
Наклейка на стол Белый шелк и Жемчуг (виниловая пленка ПВХ для мебели) под ткань Абстракция Молочный 600*1200, цена 260 грн
В подарок
Характеристики и описание
Наклейки на стол — это современное решение нестандартно украсить стол и в то же время защитить его поверхность от повреждений. Вашему вниманию стильный и качественный принт с защитной ламинацией. Такая наклейка будет служить долго и радовать красками, оригинальностью, удобством в использовании! Заказывайте наклейку прямо сейчас, пускай Ваш стол преобразится!
Все наклейки на столы
Что такое наклейка на стол
| Из чего изготовлена виниловая наклейка Наклейка изготовлена из прочной виниловой пленки, на которую методом цифровой печати нанесено изображение, сверху оно покрыто еще одним слоем прозрачной пленки (ламинация). Толщина готового изделия — 145 микрон.  Пленка поставляется в рулоне, подходит для монтажа на ровные непористые поверхности, 100% влагостойкая. Наклейка односторонняя: слой с изображением на лицевой стороне, с тыльной клеевой стороны — белая. | |
| Как ухаживать за полноцветной наклейкой Виниловые наклейки с ламинацией очень практичны в эксплуатации. Благодаря защитной ламинации поверхность наклейки можно мыть практически любыми моющими (кроме абразивов, едких и агрессивных веществ). Поверхность глянцевая, поэтому во избежание механических повреждений пользуйтесь мягкой губкой / ветошью. Средний срок службы наклейки — от 4 лет. | |
| Как заказать индивидуальную наклейку Столы и другие объекты для декорирования бывают очень разных размеров и пропорций. Вы можете заказать полностью индивидуальную наклейку. Просто сообщите нужные данные в комментарии к заказу или менеджеру во время телефонного разговора.  Стоимость будет пересчитана пропорционально нужным размерам. Возврату и обмену нестандартный товар не подлежит. Индивидуальные заказы изготавливаем по предоплате. | |
| Когда будет отправлен заказ Срок отправки стандартных наклеек — 1-2 рабочих дней, для индивидуальных заказов — 2-4 рабочих дней. В случае изменения сроков отправки мы обязательно сообщим об этом заранее. Детально о доступных способах доставки и оплаты по ссылке >> |
Посмотреть все наклейки на стол
Как быстро наклеить на стол виниловую наклейку? Смотрите видео!
GRAND — ваш интернет-магазин декора для дома!
Вернуться в каталог
Был online: Вчера
Продавец GRAND ― интерьерные наклейки, кухонные фартуки, 3d-панели
5 лет на Prom.
ua
1000+ заказов
- Каталог продавца
- Отзывы
276
г. Киев. Продавец GRAND ― интерьерные наклейки, кухонные фартуки, 3d-панели
Был online: Вчера
Код: Z180442_st
На складе в г. Киев
Доставка по Украине
10+ купили
260 грн
Оптовые цены
Доставка
Оплата и гарантии
Популярные производители в категории Интерьерные наклейки
Zatarga
Мир Декора
Sticker Wall
Собственное производство
Oracal
Эврика
Адвеста Макс
Green Life
Marvel
DesignStickers
J.A.C.H.S.
Гранд Презент
Bautech
У нас покупают
Интерьерные наклейки
Интерьерные аксессуары
Декоративные панели
Виниловое и пвх покрытие для пола
Плитка для пола и стен
Резиновое напольное покрытие
Комплектующие для мебели
Стеновые панели для кухни
Плинтусы и комплектующие к ним
ТОП теги
Полимерные полы
40х60 см детские
Крупная бытовая техника hilton
Стол из пластика черно белый
Большие круглые воздушные шары
Пластик глянцевый белый
Чистящие крема для кухни
Насколько вам
удобно на проме?
.
Шелк жемчуг
.Шелк жемчуг
+7(963) 409-03-03
-
Направляющая верхняя жемчужный шелк
Направляющая верхняя жемчужный шелк
327,27 Р
-
Профиль верхний жемчужный шелк
Профиль верхний жемчужный шелк
-
Разделитель жемчужный шелк
Разделитель жемчужный шелк
160,71 Р
-
Ручка лагуна жемчужный шелк 5,4
Ручка лагуна жемчужный шелк 5,4
1 200 Р
org/Product» data-id=»5538″>
Направляющая нижняя жемчужный шелк
Направляющая нижняя жемчужный шелк
org/Product» data-id=»5807″>
Профиль нижний жемчужный шелк
Профиль нижний жемчужный шелк
327,27 Р
org/Product» data-id=»5956″>
Ручка лагуна жемчужный шелк 4,8
Ручка лагуна жемчужный шелк 4,8
1 050 Р
Подпишитесь на обновление каталога:
Цитосовместимость регенерированной фиброиновой пленки шелка: медицинский биоматериал, применимый для заживления ран
J Zhejiang Univ Sci B.
2010 Jan; 11(1): 10–16.
doi: 10.1631/jzus.B03
, 1, 2 , 1 , 1 , 1 , 3 , 1 and † ‡, 1
Информация об авторе Примечания к статье Информация об авторских правах и лицензии Отказ от ответственности
Цель: Чтобы изучить возможность использования регенерированной мембраны из фиброина шелка для создания искусственных заменителей кожи для заживления ран, необходимо оценить ее цитосовместимость. Методы: влияние пленки регенерированного фиброина шелка на цитотоксичность, адгезию, клеточный цикл и апоптоз L9.29, рост и экспрессия фактора роста эндотелия сосудов (VEGF) клеток ECV304 и экспрессия VEGF, ангиопоэтина-1 (Ang-1), тромбоцитарного фактора роста (PDGF) и фактора роста фибробластов 2 (FGF2) экспрессии WI-38 клетки оценивали с помощью анализа 3-(4,5)-диметилтиахиазо(-z-y1)-3,5-ди-фенитетразолиумромида (MTT), подсчета жизнеспособных клеток, проточной цитометрии (FCM) и твердофазного иммуноферментного анализа (ELISA).
). Результаты. Мы показали, что регенерированная пленка фиброина шелка не была цитотоксична для клеток L929 и не оказывала отрицательного влияния на их адгезию, клеточный цикл или апоптоз; он не оказывал неблагоприятного влияния на рост и секрецию VEGF клетками ECV304 и не влиял на секрецию VEGF, Ang-1, PDGF и FGF2 клетками WI-38. Вывод: пленка из регенерированного фиброина шелка должна быть превосходным биоматериалом с хорошей цитосовместимостью, обеспечивающим основу для репарации после травмы в клинических применениях.
Ключевые слова: Регенерированная фиброиновая пленка шелка, Цитосовместимость, Цитотоксичность
Заживление ран определяется как восстановление непрерывности живой ткани и представляет собой комплексный ответ нескольких типов клеток на повреждение. Он включает агрегацию тромбоцитов и свертывание крови, образование фибрина, воспалительную реакцию, изменение основного вещества, эндотелиальную и капиллярную пролиферацию и поверхностное покрытие, регенерацию определенных типов клеток, вариабельную контрактуру и ремоделирование (Buffoni et al.
, 19).93). Заживление не будет завершено до тех пор, пока поврежденные поверхности не будут прочно скреплены коллагеном. Как правило, использование заменителя кожи необходимо для создания благоприятной среды для заживления (Nangia and Hung, 1990).
Сообщалось, что фиброин, основной компонент протеина шелка, является идеальным субстратом для пролиферации и адгезии большого количества клеток. Шелковый фиброин нашел разнообразные применения в биомедицинской области, что можно объяснить его высокой прочностью на растяжение, контролируемой биоразлагаемостью, гемостатическими свойствами, отсутствием цитотоксичности, низкой антигенностью и невоспалительными характеристиками (Mori and Tsukada, 2000; Horan et al., 2005; Meinel et al., 2005; Mauney et al., 2007). Результаты недавнего исследования показали, что фиброин шелка может стать хорошим базовым компонентом для разработки новых биомедицинских материалов, особенно в области тканевой инженерии (Altman et al., 2003). Регенерированная фиброиновая мембрана шелка изготовлена из фиброина шелка, который представляет собой природный полимерный биоматериал, полученный из шелка червей, обладающий хорошими физико-химическими характеристиками, особенно биосовместимостью (Ning et al.
, 2000). Поэтому фиброин шелка долгое время рассматривался как потенциальная биологическая матрица для заживления ран (Halsted, 189).2). Например, наиболее часто используемые хирургические нити изготавливаются из натурального шелкового волокна (Vepari and Kaplan, 2007; Wang et al., 2006a). Для разработки идеального заменителя кожи были изучены характеристики регенерированной мембраны из фиброина шелка, изготовленной из фиброина шелка. Исследования оценивали биосовместимость мембраны с фибробластами и эндотелиальными клетками, которые являются наиболее важными клетками для восстановления тканей при заживлении. Было обнаружено, что регенерированная фиброиновая мембрана шелка не обладает токсичностью (Sheng et al., 2005) или генотоксичностью (Miao et al., 2007; Gong et al., 2005), поэтому ее можно превратить в биоматериалы, такие как раневые повязки, материал для восстановления тканей и искусственная кожа. Чтобы изучить возможность использования регенерированной фиброиновой мембраны шелка для создания искусственных заменителей кожи, необходимо оценить ее биосовместимость с тканями и клетками периферической кожи.
Поскольку наиболее распространенными типами клеток, которые способствуют заживлению ран, являются фибробласты и эндотелиальные клетки, в нашем исследовании клеточная линия мышиных фибробластов L929, эндотелиальные клетки пупочной вены человека (ECV304) и нормальные клетки фибробластов легкого плода человека (WI-38) использовали для тестирования биосовместимости клеток с регенерированным фиброином шелка. Анализы цитотоксичности и пролиферации клеток с помощью 3-(4,5)-диметилтиахиазо(-z-y1)-3,5-ди-фенитетразолиумромида (МТТ) и проточный цитометрический анализ подтвердили способность регенерированной мембраны из фиброина шелка поддерживать рост клеток и пролиферация сравнима с таковой в планшете для культивирования клеток. Адгезию мышиных фибробластов L929 контролировали для оценки цитосовместимости. Для оценки молекулярной цитосовместимости наблюдали пролиферацию и секрецию фактора роста эндотелия сосудов (VEGF) ECV304 на фиброине шелка. Также изучали влияние регенерированной мембраны из фиброина шелка на экспрессию VEGF, ангиопоэтина-1 (Ang-1), тромбоцитарного фактора роста (PDGF) и фактора роста фибробластов 2 (FGF2) клетками WI-38.
2.1. Реагенты, клетки и оборудование
Клетки ECV304, L929 и WI-38, сохраненные в нашей лаборатории, культивировали в модифицированной Дульбекко среде Игла (DMEM; Sigma, Шанхай, Китай) с добавлением 10% (об./об.) эмбриональной телячьей сыворотки (FCS). ) (Хиклон, Логан, Юта). МТТ был приобретен у Sigma (Шанхай, Китай) для эксперимента по цитотоксичности in vitro. Все наборы для определения VEGF, PDGF и FGF2 для твердофазного иммуноферментного анализа (ELISA) были получены от Jingmei (Шанхай, Китай), а набор ELISA для ангиогенина-1 был приобретен от Wuhan Boster Bioengineering Co. Ltd., Китай. Пленка из регенерированного фиброина шелка была предоставлена доктором Минг-чжун ЛИ, Университет Сучжоу (Цзянсу, Китай). Пластиковые пленки из поливинилхлорида (ПВХ) и полиэтиленовые (ПЭ) пластиковые пленки были предоставлены Suzhou Plastic Corp. (Цзянсу, Китай).
2.2. Приготовление пленок из регенерированного фиброина шелка и экстракция
Шелковое волокно домашнего шелкопряда рафинировано раствором Na 2 CO 3 , растворенным в CaCl 2 -CH 3 CH 2 O-H 4 8 (1:2:8 в молярном соотношении), подвергают диализу, фильтруют и сушат при 60°С.
Таким образом были получены пленки из очищенного регенерированного фиброина шелка (Li et al., 2001; Lu et al., 2000). После совместного облучения 60 стерильные регенерированные пленки из фиброина шелка (SF), пластиковые пленки из ПВХ и пластиковые пленки из полиэтилена выщелачивали в стерильной среде DMEM (площадь поверхности образцов/объем среды = 3 см 2 /мл) при 37 °С в течение 24 ч, а затем клетки каждой экспериментальной группы культивировали в экстрактах, содержащих 10% ФТС. Клетки контрольной группы культивировали только в полной среде DMEM с 10% FCS.
2.3. Эксперимент по цитотоксичности
Анализ МТТ применяли для определения цитотоксичности пленки из регенерированного фиброина шелка на линии фибробластов мыши L929. Вкратце, клетки L929 распределяли в 96-луночные культуральные планшеты с плотностью 1×10 4 клеток на лунку и инкубировали при 37 °C. Через 24 ч культуральную среду заменяли на приготовленные выше экстракты. В качестве контроля использовали среду, содержащую только 10% FCS.
Каждая группа была проанализирована в трехкратной повторности. Через 72 ч в среду добавляли 10 мкл МТТ (5 мг/мл) и инкубировали еще 4 ч при 37°С. Кристаллы формазана в клетках солюбилизировали стоп-раствором (100 мкл/лунка). Затем измеряли значение оптической плотности (ОП) при 570 нм с использованием устройства для считывания микропланшетов модели 550 (Bio-Rad, Шанхай, Китай). Относительную скорость роста (RGR) клеток рассчитывали по формуле: RGR=(значение OD образцов)/(значение OD отрицательного контроля), а цитотоксичность оценивали в соответствии с критериями оценки цитотоксичности (таблица).
Table 1
Cytotoxicity grading criteria
| RGR (%) | Cytotoxicity grading criteria |
| 100 | 0 (non-poisonous, qualification) |
| 75–99 | 1 (легкоядовитая, квалификация) |
| 50–74 | 2 (среднеядовитая, дисквалификация) |
| 25–49 | 3 (сильноядовитая, дисквалификация) |
| 1–24 | 4 (дисквалификация) |
| 0 | 5 (дисквалификация) |
0 Открыть в0 отдельное окно Эксперимент по адгезии клеток
Клетки L929 обрабатывали SF, PVC или PE, как описано выше, в 6-луночных культуральных планшетах.
Через 1, 2, 3 и 4 часа жидкость удаляли и добавляли жидкость с фосфатно-солевым буфером (PBS) для трехкратного легкого промывания клеток в каждой группе. Затем клетки обрабатывали в течение 10 мин 0,25% (масса/объем) трипсина и подсчитывали. Коэффициент прилипания клеток (AR) рассчитывали по формуле: AR=(количество клеток, прилипших к пленкам)/(количество всех клеток)×100%.
2.5. Проточный цитометрический анализ
Клетки L929 распределяли в 6-луночные культуральные планшеты, содержащие регенерированные пленки из фиброина шелка (группа SF), пленки из ПВХ-пластика (группа из ПВХ) или пленки из полиэтилена (группа из ПЭ) с плотностью 4×10 5 клеток на лунку и инкубировали при 37°С. Клетки, которые не культивировались ни на одной пленке, использовали в качестве контрольной группы. Через 72 ч клетки собирали и промывали холодным PBS (рН 7,4). Осадки клеток фиксировали в 70% (об./об.) холодном спирте более 24 ч при 4°С, промывали холодным PBS и окрашивали раствором йодистого пропидия (PI) при 4°С в темноте в течение 30 мин.
Фазы клеточного цикла анализировали методом проточной цитометрии.
2.6. Морфология роста и кривая роста клеток ECV304 на SF
. Влияние пленки регенерированного фиброина шелка на рост клеток ECV304 определяли с помощью анализа МТТ. Клетки ECV304 распределяли в 96-луночные культуральные планшеты, содержащие пленки из регенерированного фиброина шелка (группа SF), пластиковые пленки из ПВХ (группа из ПВХ) или пластиковые пленки из полиэтилена (группа из полиэтилена) с плотностью 1×10 4 клеток на лунку и инкубировали при 37°С в течение указанных периодов времени (1–8 дней). Клетки, которые не культивировались ни на одной пленке, использовали в качестве контрольной группы. Каждая группа была проанализирована в трехкратной повторности. После различных периодов обработки наблюдали морфологию роста клеток, и рост клеток ECV304 также оценивали с помощью МТТ-анализа, как описано выше. Затем строили кривую роста клеток ECV304 в различных культурах со временем (сутки) X -ось и значение OD на оси Y .
2.7. Определение уровня секреции VEGF клетками ECV304 на СФ с помощью ELISA
Определяли влияние СФ на секрецию VEGF клетками ECV304. Клетки ECV304 обрабатывали SF, PVC или PE, как описано выше. После инкубации в течение 72 ч VEGF в супернатантах оценивали с помощью ELISA.
2.8. Определение экспрессии VEGF, Ang-1, PDGF и FGF2 в клетках WI-38 на SF с помощью ELISA
Влияние SF на экспрессию VEGF, Ang-1, PDGF и FGF2 в клетках WI-38 определяли с помощью ELISA. Вкратце, клетки WI-38 распределяли в 24-луночные культуральные планшеты, содержащие пленки из регенерированного фиброина шелка (группа SF), и инкубировали при 37 °C. Планшеты без SF использовали в качестве клеточного контроля (отрицательный контроль). После инкубации в течение 72 ч концентрации VEGF, Ang-1, PDGF и FGF2 в супернатантах оценивали с помощью ELISA.
2.9. Анализ данных
Данные представлены как среднее ± стандартное отклонение (SD). Статистическую значимость оценивали с использованием однофакторного дисперсионного анализа с повторными измерениями (ANOVA).
3.1. Эксперимент с цитотоксичностью
RGR клеток L929 на пленках SF и PE составлял 106% и 103% соответственно, а степень цитотоксичности пленок SF и PE равнялась 0, что указывает на то, что эти пленки не ядовиты. RGR клеток L929 на ПВХ-пленках составлял 93%, а их цитотоксичность была 1-й степени, что указывает на то, что ПВХ-пленка является «легкоядовитой». По критериям оценки цитотоксичности пленка SF относится к нецитотоксичным биоматериалам.
3.2. Эксперимент по адгезии клеток
AR клеток L929 на пленке SF была близка к таковой у клеток, культивируемых на чашках (контрольная группа) ( P >0,05), и большинство клеток L929 прикреплялись к пленке SF в течение 3 ч, что указывает на то, что SF пленка не оказывает отрицательного влияния на адгезию клеток L929 (таблица). Однако AR клеток L929 на пленках из ПВХ и ПЭ была значительно ниже, чем на пленке SF или в контрольной группе ( P <0,05).
Таблица 2
Коэффициент адгезии клеток каждой группы в разные периоды времени
| Group | Adhesion rate (%) | |||
| 1 h | 2 h | 3 h | 4 h | |
| SF | 4..jpg) 13 | 19.10 | 84.50 | 90.30 |
| PVC | 3.05 | 4.53 * | 5.33 * | 6.13 * |
| PE | 2.00 | 2.32 * | 3.05 * | 3.15 * |
| Control | 5.18 | 28.70 | 95.50 | 97.80 |
Open in a separate window
* P < 0,05 при сравнении группы PVC или PE с группой SF или контрольной группой через 2, 3 или 4 часа
3.
3. Анализ клеточного цикла
Показатели апоптоза в группах SF, PVC, PE и контрольной группе составили 1,7%, 25,2%, 2,9% и 2,1%, а соответствующие фазы G2/G1 – 1,957, 1,773, 1,946 и 1,965 соответственно (рис. ). Существовали значительные различия между группой PVC и тремя другими группами ( P <0,05). Эти данные показали, что SF не оказывает неблагоприятного влияния на клеточный цикл или апоптоз клеток L929. Это безопасный биоматериал.
3.4. Морфология и кривая роста клеток ECV304 на SF
Клетки ECV304 прикреплялись и хорошо росли с веретенообразной формой на SF и PE, не показывая существенной разницы по сравнению с группой отрицательного контроля (рис. ). Форма клеток ECV304 на SF была не очень четкой из-за грубой текстуры и плохой прозрачности SF. Клетки на ПВХ росли плохо, большинство из них имели округлую или эллиптическую форму и проявляли разреженность. Кривая роста ECV304 на SF была аналогична кривой роста клеток на PE и отрицательном контроле ( P >0,05), но клетки на ПВХ показали плохой рост ( P <0,05) (рис.
). Эти данные показывают, что SF не оказывает неблагоприятного влияния на рост клеток ECV304.
Открыть в отдельном окне
Открыть в отдельном окне
Морфология (×200) (а) и кривые роста (б) клеток ECV304 на различных материалах
3.5. Секреция VEGF клетками ECV304 на SF
Количество VEGF, секретируемого клетками ECV304, культивируемыми либо на SF, либо на PE, существенно не отличалось от такового в группе отрицательного контроля ( P >0,05), но секреция в группе PVC была значительно ниже ( P <0,05) (рис. ). Таким образом, пленка регенерированного фиброина шелка не оказывала отрицательного влияния на секрецию VEGF клетками ECV304.
Открыть в отдельном окне
Уровни VEGF, секретируемого клетками ECV304, на различных материалах
3.6. Экспрессия VEGF, Ang-1, PDGF и FGF2 клетками WI-38 на SF
Чтобы изучить влияние SF на экспрессию факторов, связанных с ангиогенезом, мы проанализировали экспрессию VEGF, Ang-1, PDGF и FGF2 в WI-38.
38 клеток культивировали на СФ методом ИФА. Количества VEGF, Ang-1, PDGF и FGF2 в клетках WI-38 были сходными между группой SF и контрольной группой (9).0141 P >0,05) (фиг. 1), что свидетельствует о том, что регенерированная фиброиновая пленка шелка не оказывает неблагоприятного влияния на секрецию этих факторов в клетках WI-38. Результаты показывают, что SF может помочь клеткам WI-38 стабильно экспрессировать факторы VEGF, Ang-1, FGF2 и PDGF, участвующие в ангиогенезе и заживлении ран.
Открыть в отдельном окне
Уровни секреции VEGF, Ang-1, FGF2 и PDGF клетками WI-38 на SF
Шелковый фиброин (SF), как природный волокнистый белок с широким спектром молекулярных структур, замечательные механические свойства, контролируемая морфология, универсальные возможности обработки и варианты модификации поверхности стали многообещающим полимерным биоматериалом для тканевой инженерии (Altman et al., 2003; Wang et al., 2006b). Путем смешивания с другими природными или синтетическими полимерами, такими как целлюлоза (Freddi et al.
, 1995) или хитозан (Chen et al., 1997), фиброин шелка можно перерабатывать в пленки или каркасы из волокнистого фиброина шелка для ряда применений тканевой инженерии в скелетных тканях, таких как кости и связки, и в соединительных тканях, таких как кожа. Более того, пленки, волокна и гели SF были исследованы in vitro с различными типами клеток, включая фибробласты, эпителиальные клетки, эндотелиальные клетки, глиальные клетки, кератиноциты, гепатоциты, остеобласты и стромальные клетки костного мозга. Многообещающие результаты подтверждают использование SF в качестве биоматериала для имплантатов (Unger et al., 2004). Шелковый фиброиновый материал представляет собой новый медицинский биоматериал с хорошей биосовместимостью. Наше исследование показало, что регенерированная мембрана из фиброина шелка поддерживает рост и пролиферацию клеток до уровня, сравнимого со стандартом планшета для культивирования клеток.
В механизме восстановления организма наблюдается следующий процесс: формируются микрососуды, формируется грануляционная ткань, восстанавливающие клетки и питательные вещества переносятся в область раны, и, наконец, рана заживает.
Восстановление после травмы должно проходить поэтапно три основных этапа: воспаление, формирование ткани и репарация. Важнейшей фазой является формирование грануляционной ткани, полной капилляров, и нового гранулеподобного основания. VEGF, Ang-1, FGF2 и PDGF представляют собой цитокины, участвующие в поздних стадиях воспаления и пролиферации процесса заживления ран и играющие важную роль в формировании грануляционной ткани, синтезе коллагена и ангиогенезе. Известно, что VEGF является митогеном, специфичным для эндотелия сосудов (Pettersson et al., 2000). В процессе ангиогенеза VEGF и его рецепторы на эндотелиальных клетках сосудов считаются ключевыми регуляторными факторами с наиболее сильным действием и высокой специфичностью (Neufelda et al., 19).99). Гипоксиальное микроокружение травмированных тканей и клеток может активировать экспрессию гена VEGF (Leung et al., 1989). VEGF может стимулировать рост эндотелиальных клеток in vitro и индуцировать ангиогенез in vivo (Olofsson et al., 1999).
VEGF участвует в начальных процессах образования примитивных кровеносных сосудов, в то время как Ang-1 способствует последующему ремоделированию сосудов и помогает сформировать зрелую сосудистую сеть с пространственной структурой (Augustin and Breier, 2003). FGF2 способствует регенерации фибробластов в поврежденной ткани, способствует неоваскуляризации, способствует пролиферации гладкомышечных клеток сосудов и эндотелиальных клеток, а также участвует в воспалительной реакции и восстановлении после повреждения. Ниссен и др. (1998) собрали послеоперационный раневой выпот и обнаружили, что FGF2 обладает хемотаксисом эндотелиальных клеток и способностью стимулировать ангиогенез, что указывает на то, что FGF2 также является отщепляемой средой ангиогенеза. PDGF может способствовать пролиферации фибробластов и эндотелиальных клеток сосудов, что приводит к агрегации коллагена, капиллярному ангиогенезу и продукции грануляционной ткани, все из которых оказывают сильное хемотаксическое действие на воспалительные клетки.
Наше исследование показало, что регенерированная фиброиновая пленка шелка может поддерживать стабильную экспрессию FGF2 и PDGF фибробластами, что демонстрирует большой потенциал для стимулирования ангиопоэза и ускорения заживления ран.
Эффективная искусственная кожа должна обладать способностью индуцировать дифференцировку эндотелия и ангиогенную активность, а раневая повязка не должна подавлять секрецию факторов роста ангиогенеза прилипающими клетками. Поэтому важно проверить влияние биоматериалов-кандидатов на секрецию факторов, связанных с ангиогенезом. Это исследование показало, что SF не оказывает неблагоприятного влияния на экспрессию VEGF, Ang-1, FGF2 и PDGF. Дермаграфт представляет собой криоконсервированный кожный заменитель, полученный из фибробластов человека, состоящий из фибробластов, внеклеточного матрикса и биорассасывающегося каркаса. Он производится из клеток фибробластов человека, полученных из ткани крайней плоти новорожденного. Исследование Dermagraft (передовые науки о тканях) показало, что функция Dermagraft способствует васкуляризации (Jiang and Harding, 19).
98). SF еще не зарекомендовал себя как полезная искусственная кожа и может использоваться только в качестве повязки на рану. Необходимы дальнейшие исследования, чтобы превратить фиброин шелка в инженерный биоматериал, пригодный для широкого спектра применений. Регенерированная фиброиновая пленка шелка уже может быть эффективно использована для стимуляции ангиогенеза при использовании в качестве повязки для ускорения заживления ран и, вероятно, после скрининга и денатурации также может быть разработана в медицинский биоматериал для генной инженерии с широкими потенциальными перспективами применения и способностью к способствовать заживлению кожных ран и индуцировать ангиогенез с использованием методов генной трансфекции.
Регенерированная шелковая фиброиновая пленка не оказывает неблагоприятного влияния на рост и биологическую функцию фибробластов и эндотелиальных клеток сосудов. Он также не влияет на секрецию факторов роста ангиогенеза, таких как VEGF, Ang-1, FGF2 и PDGF. Таким образом, пленка из регенерированного фиброина шелка является отличным биоматериалом с хорошей биосовместимостью.
* Проект поддерживается Национальной программой фундаментальных исследований (973) Китая (№ 2005CB623906) и Фондом медицинского развития Университета Сучжоу (№ {«type»:»entrez-нуклеотид»,»attrs»:{ «текст»:»EE134702″,»term_id»:»124239372″}}EE134702), China
1. Altman GH, Diaz F, Jakuba C, Calabro T, Horan RL, Chen J, Lu H, Richmond J, Kaplan DL. Биоматериалы на основе шелка. Биоматериалы. 2003;24( 3) Kloster Seeon Meeting of the German Priority Research Grant «Angiogenesis» Thromb Haemos, 2003;89(1):190–197.[PubMed] [Google Scholar]
3. Буффони Ф., Банчелли Г., Камби С. Заживление кожных ран: некоторые биологические параметры морской свинки. Дж Фарм Фармакол. 1993; 45: 784–790. [PubMed] [Google Scholar]
4. Chen X, Li WJ, Zhong W, Lu YH, Yu TY. pH-чувствительность и ионная чувствительность гидрогелей на основе взаимопроникающей полимерной сети комплексообразующий хитозан/фиброин шелка. J Appl Polym Sci. 1997;65(11):2257–2262. doi: 10.1002/(SICI)1097-4628(19970912)65:11<2257::AID-APP23>3.
3.CO;2-L. [Перекрестная ссылка] [Академия Google]
5. Фредди Г., Романо М., Розария М., Цукада М. Пленки из смеси фиброина шелка и целлюлозы: приготовление, структура и физические свойства. J Appl Polym Sci. 1995; 56 (12): 1537–1545. doi: 10.1002/app.1995.070561203. [CrossRef] [Google Scholar]
6. Гонг А.Х., Ли М.З., Шэн В.Х., Се Ю.Ф., Мяо Д.К., Цзян Х.И., Ву В.Ю., Ян Д.К. Влияние регенерированных шелковых пленок на цитогенетические свойства дермальных фибробластов эмбрионов крыс. Чин Дж. Биомед, инженер. 2005;24(1):38–42. (на китайском языке) [Google Scholar]
7. Halsted W. Применение тонкого шелка вместо кетгута и преимущество прошивания тканей и сосудов при остановке кровотечения. Энн Сург. 1892;16:505–526. [Google Scholar]
8. Horan RL, Adam LKA, Wang Y, Huang J, Moreau JE, Kaplan DL, Altman GH. Разложение фиброина шелка in vitro. Биоматериалы. 2005;26(17):3385–3393. doi: 10.1016/j.biomaterials.2004.09.020. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
9.
Jiang WG, Harding KG. Усиление разрастания раневой ткани и ангиогенеза за счет встроенных в матрикс фибробластов (дерматрансплантат), роль фактора роста/рассеяния гепатоцитов. Int J Mol Med. 1998;2(2):203–210. [PubMed] [Академия Google]
10. Leung DW, Cachianes G, Kuang WJ, Goeddel DV, Ferrara N. Сосудистый эндотелиальный фактор роста представляет собой секретируемый ангиогенный митоген. Наука. 1989;246(4935):1306–1309. doi: 10.1126/science.2479986. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
11. Li MZ, Wu ZY, Lu SZ, Jia SX, Yao M. Разработка пористой фиброиновой мембраны и изучение ее свойств. Шелк. 2001; 13:10–13. (на китайском языке) [Google Scholar]
12. Лу С.З., Ли М.З., Кан Н., Ву З.Й. Эпоксидный сшивающий агент, применяемый для приготовления фиброиновой мембраны. Шелк. 2000; 3: 7–9. (на китайском языке) [Google Scholar]
13. Mauney JR, Nguyen T, Gillen K, Kirker-Head C, Gimble JM, Kaplan DL. Инженерия жировой ткани in vitro и in vivo с использованием костного мозга человека и мезенхимальных стволовых клеток, полученных из жировой ткани, с трехмерными каркасами из фиброина шелка.
Биоматериалы. 2007;28(35):5280–5290. doi: 10.1016/j.biomaterials.2007.08.017. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
14. Meinel L, Hofmann S, Karageorgiou V, Kirker-Head C, McCool J, Gronowicz G, Zichner L, Langer R, Vunjak-Novakovic G, Каплан ДЛ. Воспалительные реакции на шелковые пленки in vitro и in vivo. Биоматериалы. 2005;26(2):147–155. doi: 10.1016/j.biomaterials.2004.02.047. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
15. Мяо Дж.К., Шэн В.Х., Ли М.З., Се Ю.Ф., Гонг А.Х., Ян Дж.К. Генотоксический потенциал пленок из регенерированного фиброина шелка при различных способах сшивания. Ключевые инженер мат. 2007; 342–343: 257–260. doi: 10.4028/www.scientific.net/KEM.342-343.257. (на китайском языке) [CrossRef] [Google Scholar]
16. Мори Х., Цукада М. Новый белок шелка: модификация белка шелка с помощью генной инженерии для производства биоматериалов. Преподобный Мол Биотехнолог. 2000;74(2):95–103. doi: 10.1016/S1389-0352(00)00004-0. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
17.
Нангиа А., Хунг, Коннектикут. Лабораторная оценка нового гидрогелевого заменителя кожи. Бернс. 1990;16(5):368–372. doi: 10.1016/0305-4179(90)-T. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
18. Neufelda G, Cohena T, Gengrinovitcha S, Poltoraka Z. Фактор роста эндотелия сосудов (VEGF) и его рецепторы. FASEB J. 1999; 13:9–22. [PubMed] [Google Scholar]
19. Нин Л., Сюэ М., Хуан Х.Н. Изучение биосовместимости кожных репродуктивных мембран. Chin J Rep Reconstr Surg. 2000;14(1):44–48. (на китайском) [PubMed] [Google Scholar]
20. Ниссен Н.Н., Полверини П.Дж., Кох А.Е., Волин М.В., Гамелли Р.Л., Ди Пьетро Л.А. Сосудистый эндотелиальный фактор роста опосредует ангиогенную активность во время пролиферативной фазы заживления ран. Ам Джей Патол. 1998;152(6):1445–1452. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
21. Olofsson B, Jeltsch B, Eriksson U, Alitalo K. Текущая биология VEGF-B и VEGF-C. Фарм Биотехнолог. 1999; 10: 528–535. [PubMed] [Google Scholar]
22.
Петтерссон А., Надь Дж. А., Браун Л. Ф., Сандберг С., Морган Э., Джунгли С., Картер Р., Кригер Дж. Э., Мансо Э. Дж., Харви В. С. и др. Неоднородность ангиогенного ответа, индуцированного в различных нормальных тканях взрослого человека фактором проницаемости сосудов/фактором роста эндотелия сосудов. Лаборатория Инвест. 2000;80(1):99–115. doi: 10.1038/labinvest.3780013. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
23. Sheng WH, Gong AH, Li MZ, Xie YF, Miao JC, Yang JC, Jiang HY, Lu SZ. Изучение цитотоксичности материалов регенерированного фиброина шелка. Чин Дж. Биомед, инженер. 2005;24(3):277–281. (на китайском языке) [Google Scholar]
24. Унгер Р.Э., Вольф М., Петерс К., Мотта А., Мильяреси С., Киркпатрик С.Дж. Рост клеток человека на нетканой сети из фиброина шелка: возможность использования в тканевой инженерии. Биоматериалы. 2004;25(6):1069–1075. doi: 10.1016/S0142-9612(03)00619-7. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
25. Vepari C, Kaplan DL. Шелк как биоматериал.
Прог Полим Науки. 2007;32(8-9):991–1007. doi: 10.1016/j.progpolymsci.2007.05.013. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
26. Wang Y, Blasioli JD, Kim HJ, Kim HS, Kaplan DL. Инженерия хрящевой ткани с использованием шелковых каркасов и суставных хондроцитов человека. Биоматериалы. 2006;27(25):4434–4442. doi: 10.1016/j.biomaterials.2006.03.050. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
27. Ван Ю, Ким Х.Дж., Вуняк-Новакович Г., Каплан Д.Л. Тканевая инженерия на основе стволовых клеток с использованием шелковых биоматериалов. Биоматериалы. 2006;27(36):6064–6082. doi: 10.1016/j.biomaterials.2006.07.008. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Fine Silk Pearl Magnetic Nail Powder
<Как сделать линию>
Смешайте магнитный порошок с прозрачным гелем. Мне нравится, что плотность немного смещена, а линии четкие.
После отверждения цветного геля добавьте смешанный магнитный порошок, чтобы провести линию с помощью магнита.
Когда появится нужная строка, вылечите ее.
✔ Пожалуйста, обратите внимание на направление магнита в видео 🙂
Нажмите, чтобы посмотреть видео 👆
Fine Silk Pearl Magnet Powder
Tsar~~ Tsar 🤍
Это магнитный порошок с мелкими частицами, похожими на шелк .
Вы чувствуете себя обремененным покупкой разных цветов магнитного геля 😭 Просто смешайте его с имеющимся у вас цветным гелем~
Это станет магнитным гелем!!! 🙂
⠀
Что касается цветного геля, гель-сироп кажется имеет ощущение глубины, но это не имеет значения, если вы используете его на обычном геле😃
⠀
Но самое главное в магнитном геле — это концентрация магнитного порошка .
Если он слишком жесткий, магнит не будет двигаться, а если пороха слишком мало, он не будет ощущаться как магнит.
Вы должны отрегулировать его, поместив в тонкий прозрачный гель 👆
Пожалуйста, проверьте его несколько раз, чтобы найти хорошую степень.
⠀
⠀
Есть два способа сделать магнитный гвоздь в BoniB✌
⠀ Важно направление магнита, смотрите видео выше!
1.
При нанесении магнитного геля на всю поверхность
After Color Gel One-Cot ~ Two-Cot Cure
Смешайте цветной гель + тонкий прозрачный гель + магнитный порошок
(После смешивания гель должен быть тонким)
Изготовление варочные формы с магнитами без вулканизации
⠀
2. При выполнении серебряной строчки
Смешайте магнитный порошок с прозрачным гелем. Мне нравится, что плотность немного смещена, а линии четкие.
После отверждения цветного геля добавьте смешанный магнитный порошок, чтобы провести линию с помощью магнита.
Когда появится нужная строка, вылечите ее.
Состав: 2 зеркальных стика для пудры + пудра
Емкость: около половины 5-граммового футляра
Обязательно проверяйте объем! Это несравнимо с пудрой, которая даже не засыпает пол!
<Это очень, очень важно. Пожалуйста, прочитайте перед магнитным порошком>
✅ Гель-сироп выглядит глубоким, но это не беда, если вы используете его на обычном цветном геле😃
BoniB рекомендует смешивать сразу с прозрачным гелем 🙂
⠀ ✅ Самое главное в магнитном геле — это концентрация магнитного пудра.
Если он слишком жесткий, магнит не будет двигаться, а если порошка недостаточно
Он не похож на магнит, поэтому вам нужно отрегулировать его, поместив в тонкий прозрачный гель 👆
Пожалуйста, проверьте его несколько раз, чтобы найти хорошую степень.
✅ Ориентация магнита важна в зависимости от процедуры. Пожалуйста, внимательно проверьте приведенное выше видео!
1. При нанесении магнитного геля на всю поверхность
После отверждения цветного геля с одного слоя на два, смешайте цветной гель + тонкий прозрачный гель + магнитный порошок и нанесите его.
(После смешивания гель должен быть жидким)
Без отверждения можно придать форму варки с помощью магнита и отвердить, когда будет получена желаемая форма.
⠀
2. При оформлении строки
Смешайте магнитный порошок с прозрачным гелем. Мне нравится, что плотность немного смещена, а линии четкие.
После отверждения цветного геля добавьте смешанный магнитный порошок, чтобы провести линию с помощью магнита.
